استخلاص وتنقية المركبات الكيميائية النباتية من نوى التمر ودراسة أنشطتها البيولوجية
feras falih abd - ali al - mamoori
باحث أكاديمي (Academic Researcher)
مقدمة المقال وخلاصته:
على الرغم من أن نوى التمر كانت تُعدّ في السابق من المخلفات الزراعية، فإنها تحظى حاليًا باهتمام متزايد بوصفها مصدرًا قيّمًا للمركبات النشطة حيويًا ذات التطبيقات الطبية الواعدة. هدفت الدراسة الحالية إلى تحديد المكونات الكيميائية النباتية الموجودة في مستخلصات نوى التمر، فضلًا عن تقييم نشاطها المضاد للأكسدة والمضاد للبكتيريا. في هذه الدراسة، ولضمان استخلاص المركبات النشطة حيويًا من نوى التمر، استُخدمت تقنية الاستخلاص بجهاز سوكسليت (Soxhlet Extraction)، تلتها عملية الطرد المركزي لضمان تنقية المستخلص والتخلص من الشوائب الدقيقة، مما أدى إلى الحصول على مستخلص مركّز وعالي الجودة، مناسب لإجراء الفحوصات اللاحقة. قُيّم النشاط المضاد للأكسدة للمستخلصات المدروسة باستخدام اختبار DPPH. أما النشاط المضاد للبكتيريا، فقد جرى تقييمه من خلال زراعة البكتيريا المحددة على أوساط زرعية مناسبة، وتعريضها للمستخلصات، ثم قياس مدى التأثير من خلال تحديد قطر مناطق تثبيط النمو بالمليمتر. أظهرت نتائج التحليل الكيميائي النباتي وجود البوليفينولات (Polyphenols) والتانينات (Tannins) والفلافونويدات (Flavonoids) والقلويدات (Alkaloids) بتراكيز بلغت 31 ملغم/غم، و26 ملغم/غم، و29 ملغم/غم، و211 ميكروغرام/غم، على التوالي. وفيما يتعلق بنتائج اختبار DPPH، فقد أظهرت زيادة ملحوظة تعتمد على التركيز في كفاءة اصطياد الجذور الحرة؛ إذ ارتفعت نسب التثبيط من 19.37% عند تركيز 5 ميكروغرام/مل إلى 41.68% عند تركيز 50 ميكروغرام/مل. وتوافقت هذه النتائج مع قيم مكافئ التروولوكس (Trolox Equivalent) البالغة 10.54 ميكرومولار و21.16 ميكرومولار، على التوالي. أظهرت نتائج النشاط المضاد للبكتيريا عدم ظهور مناطق تثبيط في مزارع بكتيريا الإشريكية القولونية (Escherichia coli) عند تعريضها لكلا المستخلصين، في حين تأثرت بكتيريا Streptococcus spp.، إذ سُجّلت منطقة تثبيط بقطر 4 ملم عند استخدام المستخلص الإيثانولي. إن تحويل نوى التمر، التي تُعدّ عادةً من المخلفات، إلى منتجات ذات قيمة طبية أو علاجية أو غذائية يجسّد المبادئ الأساسية للتنمية المستدامة، من خلال الجمع بين الابتكار في الصناعة الصيدلانية، والجهود الرامية إلى مكافحة مقاومة المضادات الحيوية، والالتزام بالمسؤولية البيئية. وبناءً على النتائج، خلصت الدراسة الحالية إلى أن مستخلصات نوى التمر المدروسة أظهرت نشاطًا مضادًا للأكسدة يعتمد على التركيز، كما أظهرت تأثيرًا متوسطًا مضادًا للبكتيريا، مع تفوق المستخلصات الإيثانولية في فعاليتها ضد بكتيريا Streptococcus spp.
المقدمة (Introduction)
يُعدّ هدر الغذاء قضية عالمية بارزة، إذ يُفقد أو يُهدر سنويًا ما يقارب ثلث الغذاء المُنتَج في جميع أنحاء العالم، بما يعادل نحو 1.3 مليار طن [1]. وفي هذا السياق، تتوافر نوى التمر، التي تُعدّ ناتجًا ثانويًا عن تصنيع التمور، بكميات كبيرة، إلا أنها لا تحظى باهتمام كافٍ [2].
تُصنّف نخلة التمر (Phoenix dactylifera L.) ضمن النباتات أحادية الفلقة ثنائية المسكن، التابعة للفصيلة النخلية (Arecaceae) وتحت الفصيلة Coryphoideae، وهي مجموعة تضم ما يُقدّر بنحو 200 جنس وأكثر من 2500 نوع. وقد زُرعت هذه النخلة منذ العصور القديمة، وتتمتع بأهمية كبيرة في المجالات الطبية والاجتماعية والاقتصادية والزخرفية، فضلًا عن دورها في استدامة النظام البيئي وقيمتها بوصفها مصدرًا غذائيًا متميزًا [3].
يُعدّ التمر من المحاصيل المهمة في المناطق الجافة، كما يُمثل غذاءً قيّمًا لما يمتلكه من خصائص غذائية وطبية. وعلى الرغم من أن لبّ التمر قد خضع لدراسات واسعة، فإن بذوره، التي تشكّل ما نسبته 6–15% من وزن الثمرة، عُدّت لفترة طويلة من المخلفات الزراعية. ومع ذلك، أكدت الدراسات أنها غنية بالمركبات النشطة حيويًا، مثل متعددات الفينول والتانينات والقلويدات والفلافونويدات وغيرها من مضادات الأكسدة، وقد تكون تراكيز بعض هذه المركبات أعلى من تلك الموجودة في العنب والشاي؛ مما يجعل نوى التمر مصدرًا واعدًا للمركبات النشطة حيويًا [4، 5].
وقد اقتُرح أن هذه المركبات تمتلك أنشطة بيولوجية متعددة، تشمل التأثيرات المضادة للأكسدة والميكروبات والالتهابات، كما قد تسهم في توفير تأثيرات وقائية ضد الأمراض المزمنة، مثل السرطان وداء السكري والاضطرابات التنكسية العصبية. وتشير الدراسات التي قارنت قدرة مستخلصات نوى التمر على اقتناص الجذور الحرة إلى إمكانية استخدامها مصدرًا للمغذيات العلاجية (Nutraceuticals) [6].
أظهرت الأبحاث أن المستخلصات الإيثانولية، على وجه الخصوص، تمتلك نشاطًا مضادًا للأكسدة مشابهًا لنشاط بعض المعايير الطبيعية، مما يشير إلى إمكانية الاستفادة منها في التعامل مع الاضطرابات المرتبطة بالإجهاد التأكسدي [7]. وإلى جانب هذه التأثيرات المضادة للأكسدة، أظهرت مستخلصات نوى التمر أنشطة متفاوتة مضادة للبكتيريا، سواء ضد البكتيريا موجبة الغرام أو سالبة الغرام [8].
وفي الواقع، يُعدّ تناول الموضوعات البحثية التي تهدف إلى تحويل المنتجات الثانوية، مثل مخلفات الأغذية، إلى منتجات ذات قيمة طبية واقتصادية أحد الجوانب الأساسية لتحقيق أهداف التنمية المستدامة. ويمكن لهذا التوجه أن يدعم ممارسات الاقتصاد الدائري، ويقلل من إنتاج المخلفات الزراعية، ويشجع التقنيات الصديقة للبيئة في الصناعات الغذائية والدوائية. وقد أُشير إلى أن استخدام تقنيات الاستخلاص الخضراء يمكن أن يعزز الآثار الاقتصادية والبيئية لهذا التوجه [9].
مشكلة البحث (Research Problem)
تكمن مشكلة البحث في إهمال نوى التمر، التي تشكّل نحو 6–11% من وزن الثمرة، أو محدودية استخدامها، إذ تقتصر الاستفادة منها غالبًا على استخدامها علفًا حيوانيًا منخفض القيمة. ويؤدي هذا الأمر إلى إهدار مكوناتها الغذائية وفقدان كميات كبيرة من المركبات النشطة حيويًا الموجودة فيها.
أهداف البحث (Research Aims)
يهدف البحث الحالي إلى استخلاص المركبات الموجودة في نوى التمر باستخدام الإيثانول وأسيتات الإيثيل، وتحديد المواد الكيميائية النباتية الموجودة في هذه المستخلصات، وتقييم خصائصها المضادة للبكتيريا والأكسدة.
منهجية البحث (Methodology)
متطلبات الدراسة ومكان إجراء التجارب
أُجريت هذه الدراسة في مختبر كلية الصيدلة، جامعة بابل. وشملت المواد والمكونات المستخدمة مسحوق نوى التمر، والإيثانول، والماء، والكواشف الكيميائية، ومنها كاشف 2,2-ثنائي فينيل-1-بيكريل هيدرازيل (DPPH) وكاشف فولين–سيوكالتو (Folin–Ciocalteu)، فضلًا عن الأدوات الزجاجية المخبرية اللازمة.
استخلاص نوى التمر (Extraction of Date Seeds)
لإزالة الشوائب من نوى التمر، غُسلت النوى وجُففت باستخدام فرن كهربائي عند درجة حرارة 60°م. بعد ذلك، طُحنت جيدًا للحصول على مسحوق ناعم جدًا بهدف تسهيل عملية الاستخلاص.
نُقع مسحوق المادة النباتية بنسبة 25% في 100 مل من محلول الإيثانول أو أسيتات الإيثيل بتركيز 100%، مع التحريك المستمر لمدة 24 ساعة.
رُشّح المستخلص باستخدام ورق الترشيح، ثم جُفف في فرن كهربائي عند درجة حرارة 40°م تحت التفريغ. بعد ذلك، أُذيب 5 ملغ من المسحوق الناتج في الماء المحتوي على 50% من ثنائي ميثيل سلفوكسيد (DMSO)، الذي أُضيف لتحسين الذوبانية، للحصول على تركيز للمستخلص مقداره 5 ملغ/مل.
التحليل الكيميائي (Chemical Analysis)
1. تحديد نشاط اقتناص الجذور الحرة
استُخدمت طريقة DPPH لتقييم النشاط المضاد للأكسدة للمستخلصات المحضّرة. وقد قُدرت قدرة العينات على منح الإلكترونات من خلال متابعة اختفاء اللون البنفسجي لمحلول DPPH الإيثانولي.
يعتمد هذا الاختبار الطيفي على استخدام الجذر الحر المستقر 2,2-ثنائي فينيل-1-بيكريل هيدرازيل (DPPH) بوصفه كاشفًا كيميائيًا، مع تحضير المحلول بتركيز 0.002%.
أُضيفت تراكيز مختلفة من العينات إلى أنابيب منفصلة، ثم استُكملت الأحجام باستخدام الإيثانول حتى بلغ الحجم 2 مل. بعد ذلك، أُضيف 2 مل من محلول DPPH إلى جميع الأنابيب، بتركيز يتراوح بين 2.0 و0.001 ملغ/مل، ثم تُركت المحاليل في الظلام لمدة 30 دقيقة.
واتُّبعت الخطوات نفسها لكل من العينات والمادة القياسية، وأُجريت جميع الاختبارات بثلاث مكررات. بعد ذلك، قيس الامتصاص عند طول موجي قدره 517 نانومتر باستخدام مقياس الطيف الضوئي، واستُخدم مزيج الإيثانول وDPPH بوصفه عينة السيطرة [10].
استُخدمت المعادلة الآتية للحساب:
حيث إن:
A: الكثافة الضوئية لعينة السيطرة.
B: الكثافة الضوئية للعينة المختبرة.
2. تحديد محتوى الفلافونويدات (Determination of Flavonoids)
استُخدم الكيرسيتين (Quercetin) لتحضير منحنى المعايرة، باستخدام محاليل قياسية بتراكيز 25 و50 و80 و100 و150 و200 و250 و300 ملغ/100 مل في إيثانول بتركيز 80% حجميًا.
مُزج 0.5 مل من المحاليل القياسية أو العينات مع 1.5 مل من الإيثانول بتركيز 95%، و0.1 مل من محلول نترات الألومنيوم بتركيز 10%، و0.1 مل من محلول أسيتات البوتاسيوم بتركيز 1 مول/لتر، و2.8 مل من الماء منزوع الأيونات.
أما العينة الفارغة (Blank)، فقد استُبدل فيها محلول نترات الألومنيوم بتركيز 10% بحجم مساوٍ من الماء منزوع الأيونات.
بعد حضن العينات في درجة حرارة الغرفة لمدة 30 دقيقة، قيس امتصاص مزيج التفاعل عند طول موجي قدره 415 نانومتر. وعُبّر عن محتوى الفلافونويدات بمكافئات الكيرسيتين.
3. تحديد المحتوى الكلي للفينولات (Determination of Total Phenolic Content)
حُدد المحتوى الكلي للفينولات في المستخلصات الجافة باستخدام اختبار فولين–سيوكالتو (Folin–Ciocalteu).
مُزج 1 مل من العينة، بتركيز 1 ملغ/مل، مع 1 مل من كاشف فولين–سيوكالتو الفينولي. وبعد مرور خمس دقائق، أُضيف 10 مل من محلول كربونات الصوديوم بتركيز 7%، تلا ذلك إضافة 13 مل من الماء منزوع الأيونات، ثم مُزج الخليط جيدًا.
حُفظ المزيج في الظلام لمدة ساعة ونصف عند درجة حرارة 23°م، ثم قيس الامتصاص عند طول موجي قدره 760 نانومتر.
قُدّر محتوى الفينولات عن طريق الاستيفاء باستخدام منحنى معايرة مُحضّر باستخدام محلول المستخلص قيد الدراسة. وأُجري تحديد المركبات الفينولية بثلاثة مكررات، وعُبّر عن المحتوى الفينولي بوحدة ملغ من مكافئات حمض الغاليك لكل غرام من العينة الجافة [10، 11].
4. تحديد المحتوى الكلي للتانينات المكثفة
حُدد محتوى التانينات، أو البروأنثوسيانيدينات (Proanthocyanidins)، باستخدام طريقة برودهيرست وزملائه مع إجراء بعض التعديلات، مع استخدام الكاتيشين مركبًا مرجعيًا.
أُضيف 400 ميكرولتر من المستخلص إلى 3 مل من محلول الفانيلين بتركيز 4% في الميثانول، ثم أُضيف 1.5 مل من حمض الهيدروكلوريك المركز. وبعد الحضن لمدة 15 دقيقة، قيس الامتصاص عند طول موجي قدره 500 نانومتر.
عُبّر عن محتوى التانينات المكثفة بوحدة غرام من مكافئات الكاتيشين لكل 100 غرام من المادة الجافة ((gtext{ catechin equivalents}/100,gtext{ DM})) [12].
5. تحديد المحتوى الكلي للقلويدات (Determination of Total Alkaloids)
تحضير محلول البروموكريزول الأخضر (Bromocresol Green):
أُذيب نحو 69.8 ملغ من كاشف البروموكريزول الأخضر في 3 مل من محلول هيدروكسيد الصوديوم بتركيز 2 مول/لتر، و5 مل من الماء منزوع الأيونات، حتى ذوبانه بالكامل. ثم استُكمل الحجم بالماء منزوع الأيونات إلى لتر واحد.
تحضير المحلول المنظّم الفوسفاتي (Phosphate Buffer) عند pH = 4.7:
ضُبط الرقم الهيدروجيني لمحلول فوسفات الصوديوم بتركيز 2 مول/لتر، المحضّر بإذابة 71.6 غرامًا من (Na_2HPO_4) في لتر واحد من الماء منزوع الأيونات، إلى 4.7 باستخدام حمض الستريك بتركيز 0.2 مول/لتر، والمحضّر بإذابة 42.02 غرامًا من حمض الستريك في لتر واحد من الماء منزوع الأيونات [13].
تحضير محلول الأتروبين القياسي (Standard Atropine Solution):
أُذيب 1 ملغ من الأتروبين النقي في 10 مل من الماء منزوع الأيونات. ثم نُقلت أحجام مقدارها 0.2 و0.4 و0.6 و0.8 و1 مل من محلول الأتروبين القياسي إلى أنابيب معقمة.
أُضيف إلى كل أنبوب 5 مل من المحلول المنظّم الفوسفاتي و5 مل من محلول البروموكريزول الأخضر، ثم أُضيف 4 مل من الكلوروفورم ببطء مع التحريك المستمر.
وبالمثل، أُضيف 1 مل من مستخلص نوى التمر إلى أنابيب معقمة، ثم أُضيف 5 مل من المحلول المنظّم الفوسفاتي و5 مل من محلول البروموكريزول الأخضر. بعد ذلك، أُضيف 4 مل من الكلوروفورم تدريجيًا مع التحريك المستمر.
وفي النهاية، قيس امتصاص طبقة الكلوروفورم عند طول موجي قدره 470 نانومتر [14].
النتائج (Results)
نتائج التحليل الكيميائي
يوضح الجدول (1) نتائج التحليل الكيميائي النباتي لمستخلصات نوى التمر المدروسة. وأظهرت النتائج وجود متعددات الفينول والتانينات والفلافونويدات والقلويدات بتراكيز بلغت 31 ملغ/غرام، و26 ملغ/غرام، و29 ملغ/غرام، و211 ميكروغرام/غرام، على التوالي.
الجدول (1): نتائج التحليل الكيميائي
المركبات الفعالة | التركيز |
|---|---|
متعددات الفينول الكلية (ملغ/غرام) | 31 |
التانينات (ملغ/غرام) | 26 |
الفلافونويدات (ملغ/غرام) | 29 |
القلويدات (ميكروغرام/غرام) | 211 |
القدرة المضادة للأكسدة لنوى التمر باستخدام اختبار DPPH
يوضح الجدول (2) نتائج القدرة المضادة للأكسدة لمستخلصات نوى التمر المدروسة، والتي عُبّر عنها بنسبة التثبيط وبالسعة المضادة للأكسدة المكافئة للتروولوكس (Trolox).
أظهرت النتائج زيادة ملحوظة تعتمد على الجرعة في كفاءة اقتناص الجذور الحرة؛ إذ ارتفعت نسبة التثبيط من 19.37% عند تركيز 5 ميكروغرام/مل إلى 41.68% عند تركيز 50 ميكروغرام/مل. وبلغت القيم المكافئة للتروولوكس 10.54 و21.16 ميكرومولار، على التوالي.
الجدول (2): القدرة المضادة للأكسدة لمستخلصات نوى التمر
تركيز مستخلص نوى التمر (ميكروغرام/مل) | نسبة التثبيط (%) | المكافئ المضاد للأكسدة للتروولوكس (ميكرومولار) |
|---|---|---|
5 | 19.37 | 10.54 |
10 | 22.50 | 12.03 |
15 | 23.48 | 12.49 |
20 | 29.16 | 15.20 |
30 | 36.01 | 18.46 |
40 | 39.14 | 19.95 |
50 | 41.68 | 21.16 |
المصادر والمراجع المعتمدة:
المراجع (References)
1. منظمة الأغذية والزراعة للأمم المتحدة (FAOSTAT). (2020). قاعدة البيانات الإحصائية لمنظمة الأغذية والزراعة للأمم المتحدة. روما، إيطاليا.
2. سليم، س.، وعبد الماجد، م.، والشراري، ت.، والمحيّاوي، م. س.، والرحَيلي، م. ح.، والجعوني، س. ك.، وورّاد، م.، ومحمد، ح. س.، وأختر، ن.، وعبد الغواد، هـ. (2022). نوى نخيل التمر: التركيب الحيوي الفعّال، والنشاط المضاد للبكتيريا، والإمكانات المضادة للطفرات. Agronomy، 12(1)، 54.
3. عبد الحميد، ن. أ.، ومصطفّر، ن. هـ.، وموليدياني، م.، وميدياني، أ.، وإسماعيل، إ. س.، وثام، س. ل.، وآخرون. (2020). تقييم جودة الخصائص الفيزيائية والمركبات الكيميائية النباتية والأنشطة البيولوجية والتحليل التقريبي لتسعة أصناف من ثمار نخيل التمر السعودي. Journal of the Saudi Society of Agricultural Sciences، 19(2)، 151–160.
4. بوحلالي، إ. د. ت.، وعالم، س.، وناسير، ج.، وبنلياس، م.، ومبارك، أ. ن.، وزغزوتي، ي. ف. (2017). التركيب الكيميائي النباتي والقدرة المضادة للأكسدة لثلاثة أصناف من بذور التمر (Phoenix dactylifera L.) المزروعة في جنوب شرق المغرب. Journal of the Saudi Society of Agricultural Sciences، 16(4)، 350–357.
5. خليل، ن.، وأبو الفضل، ي. س.، وبشر، م.، ومصطفى، ن. م.، والخوّاس، ي. أ. (2025). دراسة مقارنة للتركيب الكيميائي والأنشطة المضادة للأكسدة والسكري لثلاثة أصناف من بذور التمر (Phoenix dactylifera L.). Future Journal of Pharmaceutical Sciences، 11(1)، 64.
6. الخوري، م. أ.، وكونغ، أ. س.، والجعفري، م. ن.، وأبو شليبي، أ.، وإيرين ليم، س. هـ.، وتشنغ، و. هـ.، وتشونغ، س. م.، ولاي، ك. س. (2022). التركيب الكيميائي الحيوي والأنشطة البيولوجية لبذور نخيل التمر (Phoenix dactylifera L.): مراجعة. Biomolecules، 12(11)، 1626.
DOI: https://doi.org/10.3390/biom12111626
7. هيمانشو، وكومار، ن.، وكانغوال، إ.، وأوبادياي، أ. (2024). تقييم التركيب الغذائي والفحص الكيميائي النباتي والأنشطة المضادة للأكسدة والبكتيريا لبذور نخيل التمر (Phoenix dactylifera). Discover Food، 4(1)، 151.
8. باسكاراشاريا، ر. ك.، وباسكاراشاريا، أ.، وستاثوبولوس، س. (2023). مراجعة منهجية للنشاط المضاد للبكتيريا للمستخلصات متعددة الفينول من نواة نخيل التمر (Phoenix dactylifera L.). Frontiers in Pharmacology، 13، 1043548.
9. سوبهاش، أ. ج.، وباميجباد، ج. ب.، وأياش، م. (2024). الرؤى الحالية حول تثمين المنتجات الثانوية للتمر من أجل صناعات غذائية مستدامة وتكنولوجيا مستدامة. Sustainable Food Technology، 2(2)، 331–361.
10. خادابادي، س. س.، وديور، س. ل.، وبافيسكار، ب. أ. (2011). علم العقاقير النباتية التجريبي: دليل شامل. الطبعة الأولى. نيرالي براكاشان، بونه، الهند، 2011؛ 4(13).
11. دو، كيو. د.، وأنغكاويجايا، أ. إ.، وتران نغوين، ب. ل.، وهوينه، ل. هـ.، وسوتاريدجو، ف. إ.، وإسماجي، س.، وجو، ي. هـ. (2014). تأثير مذيب الاستخلاص في المحتوى الكلي للفينولات والمحتوى الكلي للفلافونويدات والنشاط المضاد للأكسدة لنبات Limnophila aromatica. Journal of Food and Drug Analysis، 22(3)، 296–302.
12. برودهيرست، ر. ب.، وجونز، و. ت. (1978). تحليل التانينات المكثفة باستخدام الفانيلين المحمّض. Journal of the Science of Food and Agriculture، 29(9)، 788–794.
13. الحربي، ك. ل.، ورامان، ج.، وشين، هـ. ج. (2021). ثمار التمر وبذورها في مستحضرات التجميل الغذائية (Nutricosmetics). Cosmetics، 8(3)، 59.
14. أجانال، م.، وغوندكالي، م. ب.، وناياك، س. أُو. (2012). تقدير المحتوى الكلي للقلويدات في مستحضر Chitrakadivati باستخدام مقياس الطيف الضوئي للأشعة فوق البنفسجية. Ancient Science of Life، 31(4)، 198.
15. مرابط، أ.، وخيمينيز أراوخو، أ.، وغيلين بيخارانو، ر.، ورودريغيز أركوس، ر.، وسينديك، م. (2020). بذور التمر: مصدر واعد للزيوت ذات الخصائص الوظيفية. Foods، 9(6)، 787.
16. فرنانديز لوبيز، ج.، وفيودا مارتوس، م.، وساياس باربيرا، إ.، ونافارو رودريغيز دي فيرا، ك.، وبيريز ألفاريز، ج. أ. (2022). الإمكانات البيولوجية والغذائية والوظيفية والصحية لثمار نخيل التمر (Phoenix dactylifera L.): الأبحاث الحالية والآفاق المستقبلية. Agronomy، 12(4)، 876.
17. الفارسي، م. أ.، ولي، س. ي. (2008). تحسين استخلاص المركبات الفينولية والألياف الغذائية من بذور التمر. Food Chemistry، 108(3)، 977–985.
18. نواز، هـ.، وشاد، م. أ.، ورحمن، ن.، وأندليب، هـ.، والله، ن. (2020). تأثير قطبية المذيب في مردود الاستخلاص والخصائص المضادة للأكسدة للمركبات الكيميائية النباتية المستخلصة من بذور الفاصولياء (Phaseolus vulgaris). Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences، 56، e17129.
19. لي، ج. إ.، وجاياكودي، ج. ت. م.، وكيم، ج. إ.، وجونغ، ج. و.، وتشوي، ك. م.، وكيم، ت. س.، وآخرون. (2024). تأثير اختيار المذيب في استخلاص المركبات النشطة حيويًا من الفصيلة النجمية (Asteraceae): مراجعة مقارنة. Foods، 13(19)، 3151.
20. العلوي، ر. أ.، وآخرون. (2021). نخيل التمر (Phoenix dactylifera L.): المنتجات الطبيعية والخيارات العلاجية. Plants، 10(6)، 1200.
21. حمد، إ.، وآخرون. (2021). النشاط المضاد للميكروبات لمستخلصات نخيل التمر ومركباتها الفينولية.